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              發布時間:2021-06-13 04:58  

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              MTT檢測

              MTT 是一種檢測細胞存活和生長的方法。其檢測原理為活xi胞線粒體中的琥珀酸脫氫酶能使外源性 MTT 還原為水不溶性的藍紫色結晶甲瓚(Formazan)并沉積在細胞中,而死細胞無此功能。二jia基亞砜(DMSO)能溶解細胞中的甲瓚,用酶聯免yi檢測儀在 570nm 波長處測定其光吸收值,可間接反映活xi胞數量。(3)從中間剪斷股骨和脛骨,用2ml無菌注she器吸取DMEM/F12溶液沖出gu髓細胞多次,再用針頭吹打,吸管吸入離心管內,1000r/min離心5min,棄上清,用PBS重懸細胞。





               細胞ELISPOT檢測    

                   1.培養板的預處理:在24孔培養板內加0.5ml 0.2%戊er醛,37℃,4h,棄掉板中的處理液,用PBS洗滌3次,每次3min;

                   2.抗原包被:將適量抗原溶于包被緩沖液中,每孔加入0.5ml,4℃過夜,PBS-T洗滌3次,每次3min;

                   3.制備細胞懸液:將待測已致敏小鼠處死,取出pi臟,置于加有Hanks液的平皿內,用鈍頭直角9號zhu射器針頭破少許脾被膜后,趕出細胞,用毛細吸管輕輕吹散細胞團后,將懸液通過250目尼龍網,取濾液,1000r/min離心5min,Hanks液洗滌3次,計數細胞后,用1640液重新懸浮細胞,配成所需濃度;6ml明膠-底物液,約3min,混合液凝固,將培養板取出,置室溫5min,將板倒置,用肉眼和低倍放大鏡計數所顯示出的顏色的斑點。

                   4.往各孔中加入0.5ml含不同濃度(104-106/ml)的細胞懸液,置37℃,5%CO2條件下孵育2-4h,棄掉培養液,PBS-T洗滌3次,每次3min;

                   5.往各孔中加入0.5ml生物素化抗ti(Bio-Ab)(2μg/ml),37℃孵育1h或4℃過夜,棄掉液體,PBS-T洗滌3次,每次3min;

                   6.加入辣根過氧化物酶結合的親合素(Avi-HRP)(2μg/ml),37℃孵育30min,棄掉液體,PBS-T洗滌3次,每次3min;

                   7.配制明膠-底物液:在37℃水浴中,將2.5mlTMB溶液(4mg/ml  jia醇溶液)滴加入7.5ml10%明膠溶液(用pH5.0磷酸鈉-檸檬酸緩沖液配制)邊加邊攪,溶液呈白色,加入14μl 3% H202;

                   8.顯色與計數:將培養板底冰浴,每孔加入0.6ml明膠-底物液,約3min,混合液凝固,將培養板取出,置室溫5min,將板倒置,用肉眼和低倍放大鏡計數所顯示出的顏色的斑點。





              成纖維細胞分離方法

              1.處死孕鼠,全身置于75%酒精里浸泡,然后在超凈臺中用剪刀和鑷子將孕鼠皮膚剪開,用另外- -組剪刀、鑷子剪開腹部肌層,露出,后用第三組剪刀和鑷子將小心取出放在盛有D-PBS的玻璃平皿中,沖洗去血。

              2.用兩把彎鑷子將胚胎外的胞膜小心去除,然后夾掉頭和內臟,將其余胚胎轉移到一個裝有30 ml D-PBS的50 ml離心管中,輕輕顛倒兩次,倒掉D-PBS,再重復此步驟一次,注意要留少許D-PBS,然后將胚胎轉移到另- -裝有D-PBS的平皿中,并用手術刀片將其細細切碎。使用不同孔徑的聚碳酸酯膜transwell小室放入培養板中,將細胞接種于小室中,利用培養液成分的差異誘導細胞運動,檢測細胞的遷移和侵襲能力的差異。

              3. 用200 μ的移液槍反復、快速地吹打平皿中的液體,轉移至15 ml離心管中,于4C 1500 rpm離心5分鐘,倒掉上清,以10 ml胰酶重懸沉淀,放在37C水浴中消化30分鐘,且每隔五分鐘輕輕晃動,使之充分消化。

              4.將上層細胞懸液倒入一個裝有10 ml MEF生長培養基的50 ml離心管中,用200目的尼龍網過濾后,以1500 rpm離心5分鐘收集細胞,再用30 ml MEF生長培養基洗滌兩次。

              5.細胞沉淀用15 ml MEF生長培養基重懸后進行細胞計數(- -般8只14天的胎鼠可獲得2-3x107細胞)。

              6. 3x106細胞懸浮于15 ml MEF生長培養基中,接種到200 ml培養瓶中。

              7. 24小時后更換新鮮的MEF生長培養基。

              8.細胞長滿后,先用D-PBS沖洗,倒掉后加胰酶消化(此步時間不宜過長,作者- -般不超過五分鐘),按1:5傳代。

              9. 細胞再次長到覆蓋率80-90%左右, 將其消化后,常規凍存(凍存液要現配)。





              細胞培養中常見的污染及解決方法


              支原體污染

              支原體是隱蔽的污染物,不能通過過濾去除。顯微鏡下沒有任何可見的支原體污染跡象,比如細胞病變和濁度或 pH 值變化(即使在嚴重污染的培養基中),這樣就會導致我們產生錯誤的安全感。而在牛中,支原體是常見的微生物之一。

              解決方法:通常的過濾滅菌方法對支原體沒有影響。磁性細胞標記方式應用MACS技術進行磁性細胞分選重要的一點是高質量的標記。細胞一旦被支原體污染,特別是對重要的細胞系,必須去除支原體,一般的方法有、抗和抗與補體聯合。值得注意的是,支原體很突出的結構特征是沒有細胞壁。因此,它對作用于細胞壁的生物合成(如 β-內酰胺類、萬古等)完全不敏感,并且通常對多粘菌素、利福平和類具有耐藥性。相反,四環素類和大環內酯類對支原體的抑制作用很強,而氨基糖苷類和氯的抑制作用較弱。






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