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細胞復蘇凍存袋

1. 從液氮容器中取出凍存管，直接浸入37℃溫水中，并不時搖動令其盡快融化。

2. 從37℃水浴中取出凍存管，打開蓋子，用吸管吸出細胞懸液，加到離心管并滴加10倍以上培養液，混勻；

3. 離心， 1000rpm，5min；

4. 棄去上清液，加入含10%小牛血培養液重懸細胞，計數，調整細胞密度，接種培養瓶，37℃培養箱靜置培養；

5. 次日更換一次培養液，繼續培養。

細胞凍存步驟

1.用移液器吸走原培養基，加入適量PBS洗1-2遍;

2.加入適量胰酶，置于培養箱中消化;

3.待消化到位后加入適量血漿或完全培養基終止消化，800-1000rpm離心3-5min;

4.配制凍存液，待細胞離心后去上清，加入凍存液重懸，調整細胞濃度為3×106~1×107 cells/mL，轉移到凍存管中;

5.將凍存管放入程序降溫盒中，-80度過夜，然后轉移到液氮中保存。

6.凍存細胞后應取出一管復蘇，檢測細胞的存活率。理論上細胞可在液氮內長期保存，

為穩妥起見可在細胞凍存半年后復蘇培養，觀察細胞生長情況，再繼續凍存

凍存袋的應用

對于需要保存5年以上的體外細胞的方法,-196°℃的深低溫液氮保存簡便,實用.凍存后的細胞損傷小活力高能保障患者移植后造血功能的早期恢復,反之則導致造血功能恢復的延遲甚至失敗.原有的液氮罐保存方式是將裝有千細胞的凍存袋放入圓筒狀的容器中后,再放入液氮罐中保存,由于凍存袋與圓筒狀的容器形狀尺寸的不匹配冷凍保存時會造成凍存袋的變形導致千細胞被擠壓受損甚至消滅,且受液氮罐空間限制能凍存的數量有限.針對如何經濟,較大容量的保存細胞.