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發布時間:2020-12-15 06:15  
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目前多數生物試驗室,分子實驗每天都在大規模進行,污染源已經無處不在,特異性的,非特異性的,同源的,非同源的,廣泛分布在樣本容器、實驗室臺面,試劑溶液中、儀器表面內管附著等等,你以為普通的清理就能解決這些污染源嗎?必須是不行的,實驗室大拿們都為了清除這些污染源研究出好多種方法,整理跟大家共享。
按照一套標準的實驗方法進行操作,對于新進實驗室的同學更為重要。因為失敗是新手們的常事,如果我們不能保證我們試驗試劑的純度以及無水要求是否滿足等等,那么一旦實驗失敗了,我們如何尋找原因?到底是操作失誤還是其他?
避免在實驗室嬉戲打鬧。一是會一不留神碰到試劑等,二是容易分心錯將溶劑加錯,影響實驗結果或存在安全隱患(兩個不直接接觸溶劑混在一起)。按照試劑盒說明書進行。對于出現弱陽性結果的樣本應進行重復檢測,并注意與可能的實驗室輕度或樣本交叉“污染”所致假陽性結果區別。 采購驗收工作中容易出現的誤區,有的實驗室供應品驗收流于形式,而有的實驗室對某一個品牌一次驗收合格了就認為今后采購就不用再驗收了,質量是沒問題的;有的實驗室認為,是大廠生產的試劑就沒問題,就適用于所有的檢測工作。
當然每個省份在PCR實驗室技術評審時所要求的重點都有所差異,有些省份比較重視質量控制,有些省份比較重視結果的發放及抱怨處理,有些則熱衷于檢查儀器及試劑的資質。分析我國大PCR實驗室的檢測項目不難發現,近80%的實驗室采用熒光PCR試劑盒進行臨床檢測,即這部分實驗室不存在開放性核酸鑒定環節,試劑工作液的配制多在核酸制備完成后進行,依存“試劑配置與PCR擴增之間的時間越短越好”的原則,多數實驗室的試劑配制均在核酸制備室完成,也就是說,試劑配制室的存在基本被忽視,了解了羅氏COBAS的操作方式,這種做法便顯得無可厚非!核酸制備完成并加入PCR反應液后,移管到擴增室,由于采用封閉核酸鑒定的方法,這樣擴增室的設置也同樣顯得多余!