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發布時間：2021-09-15 05:02
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細胞核著色不佳，細胞核著色過淺，鹽酸分化時間過長或 素染液時間過長。需要縮短分化時間或延長堿化時間；每日加入少量新鮮 素染液或重新配制素液。在固定之前制片干燥。所以對巴氏染色的制片需要嚴格遵守濕固定的原則。自來水的PH值偏酸性。使用堿性溶液。
細胞核著色過深，鹽酸溶液濃度不夠。適當加入幾滴鹽酸以增加濃度。制片用高于95%以上濃度的 酒精固定后可以出現染色過深。應用95%酒精固定。
細胞漿著色不佳，如果全片內胞漿都淡染，則需要延長染色時間或更換新液。如果胞漿不分色，均為淺紅色。制片在固定前干燥或制片被有大量球菌樣細菌影響胞漿染色。此情況可以適當增加染色時間能夠部分糾正不分色狀況。胞漿染成灰色或紫色，是由于 素染色時間過長或鹽酸分化不佳。經過褪色后重新 素可以糾正。由于標本的不同，同樣配方的EA染液可造成偏藍、偏綠和偏紅，對不同的標本應該使用不同的EA染液。一般認為，EA36和EA50用于婦科標本，而EA65或改良EA用于非婦科標本。
巴氏染色液操作方法：
1、細胞涂片經95%乙醇浸泡固定10分鐘?！ ?
2、將已固定的涂片放入素染色液中浸泡5分鐘，后用水沖洗。
3、將涂片浸入1%鹽酸酒精染色液分化數秒，水洗并浸泡2—5分鐘藍化?！ ?
4、將涂片浸入50%乙醇30秒，95%乙醇2分鐘?！ ?
5、將涂片浸入橙黃染色液中浸泡1—3分鐘。
6、將涂片在95%乙醇中浸洗2次
7、將涂片在EA50染色液中浸泡5分鐘。
8、將涂片在95%乙醇中浸洗2—3次，無水乙chun脫水，二透明，樹膠封片。
9、顯微鏡觀察。
巴氏染色液的使用注意事項
1、冬季氣溫較低時，素染色液不易著色，可適當延長染色時間。
2、橘黃G染色液染色時間不宜過長，且在乙醇中要盡量洗凈多余的染色液，否則會影響EA50染色液或EA36染色液的著色。
3、請不要將新舊批號的EA50染色液或EA36染色液混合使用。
4、該試劑盒貯存時，盡量避免高溫及光亮環境以免影響品質和效果
5、巴氏染色液僅用于體外診斷，應由人士使用及進行結果的判讀。
6、使用前應詳細閱讀說明書，并做好個人衛生防護，在有效期內使用，生產日期、生產批號和失效日期見包裝。
7、用后應按醫院或要求處置廢棄物。
